最近坛子里有几位朋友询问exosome-free FBS的制备方法，hzangs在每个帖子都做了回答。为了方便大家了解这方面的技巧，hzangs在这里做一个略微的总结并提供一份简要的protocol给大家参考。面对诸多大牛，可能我的叙述有不严谨的地方，班门弄斧还请各位多多指正。
很多朋友目前都在尝试从细胞培养上清中分离外泌体，这就存在一个问题：使用正常培液养细胞再换无血清培液收外泌体，还是直接使用exosome-free FBS配制培液用于培养细胞收外泌体？hzangs打开自己endnote里的文献集，从上自下打开数篇CNS及子刊的paper，参考了一下（PMID：24735924、25417103、25985394、26524530、26106858），所有的这些CNS及子刊的paper均是使用exosome-free FBS培养细胞再收上清分离exosomes的。由此可见，在高质量的paper里，大家更倾向于使用含有exosome-free FBS培液来培养细胞收上清分离exosomes。至少肿瘤研究方面是这样的！
既然很多高质量的paper都在使用exosome-free FBS配制的培液培养细胞收外泌体。作为追风者的我虽然没有能力发这些高质量的paper，但是单位里还是有设备让我在方法上接近高质量paper的。自我安慰一下，哈哈！
废话这么多，那就开始分享一下一些paper里提到过的使用超速离心机制备exosome-free FBS的方法吧。目前常见的有两种方法，一种是先配置20%FBS的培液，然后培液超速离心去除exosomes后用于细胞培养，另一种是直接FBS长时间超速离心去除exosomes后再用于配制培液养细胞。考虑到工作量以及机器的使用频率，hzangs选择了后者，当然这也是很多paper里选择的方法。下面我就来分享一下大概的制备流程。至于分离效果，我们在最后秀数据讨论。如何使用这些exosome-free FBS 我们也在后面说。
材料及设备：FBS、超速离心机、超速离心机转子、50ml离心管、0.45um滤器、10ml或20ml注射器。
- 你需要将FBS融化成液体，这是必须的。
- 之后你需要将FBS分装到超速离心管中，上机超离120000g 14-16h。PS:一般hzangs会在这一步选择过夜超离，因为晚上使用超速离心机的人很少很少，这样既不会耽误别人的实验，也节省自己的时间。
- 你需要收集离心管里约90%的上清。注意，这里不要倒，一定要使用移液器从上方吸出来。最好用十几毫升的那种pipette，方便省时还易操作。你需要贴着液面吸取FBS，以避免扰动底部的沉淀，请参见下图：
（PS：大家有没有被hzangs的绘画功底所折服，反正我自己已经被折服了，大家就凑合看吧。 哈哈哈哈哈哈）
- 转移到50ml离心管的FBS混匀后使用45um的滤器过滤即可得到无菌的exosome-free 的FBS。冻起来，随用随取。
每次制备会有10%的血清损耗，这是不是太浪费了！！！
先别急着扔。这部分血清还有其他用处。你可以收起来备用。依据hzangs的师弟实践得出真知，这部分血清可以用于冻存细胞，或者有哪些细胞状态不好，可以用这部分血清配制培液养一养，细胞会长得生龙活虎，明显比一般的FBS培养的细胞涨势迅猛！
可能还有朋友比较担心，这样制备的exosome-free FBS是否会残留大量的exosomes。我们可以参考一下beckman所提供的数据。
这个数据上可以看出，超离后的FBS含有的粒子数目明显低于普通FBS，与商品化的exosome-free FBS相近。
培养细胞收上清很麻烦。该如何操作比较简便呢？
hzangs分享一下自己的方法给大家作参考。以培养肿瘤细胞为例。通常会先铺50%密度的细胞到培养皿中，然后加入exosome-free FBS配制的培液，培养72小时。hzangs的细胞刚好是72h从50%长到100%，之后吸取上清用于外泌体分离，细胞消化下来继续按照50%的密度铺板，继续使用exosomes-free FBS配制的培液培养，72h后就又可以收一次了。
Hzangs的分享到此结束。有实验条件的朋友可以尝试一下。如有其它问题，大家可以到坛子里的同名贴下留言给我。谢谢大家~
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外泌体资讯网 exosome-free FBS的制备策略及使用技巧
