作者：企鹅
尽管在20世纪60年代后期首次描述了哺乳动物组织或体液中细胞周围存在囊泡，但直到2011年才提出通用术语“细胞外囊泡”（EVs）来定义所有脂质双层膜包裹的细胞外结构（图1）。如在20世纪80年代所述（图2），EV可以通过质膜的向外出芽或通过涉及晚期多泡内吞区室（多泡体，MVB）与质膜的融合的细胞内内吞运输途径形成（图2）。这种融合事件导致这些区室的腔内囊泡（ILV）的细胞外释放，产生称为“外泌体”的EV亚型，其具有与ILV相同的大小（直径<200 nm）。最初提出外泌体分泌作为细胞消除不必要蛋白质的机制。然而，20世纪90年代后期的工作表明它可以起到细胞间通讯的作用，特别是在免疫反应和癌症方面。对这一概念的强烈支持发生在2007年，当时外泌体被证明含有mRNA和微小RNA，当转移到受体细胞时，它们仍保持功能并改变靶细胞行为。同时，被称为微泡（microvesicles）、微粒（microparticles）或ectosomes的EVs可能从质膜释放，也被证明可以在细胞之间转移功能蛋白和RNA。已经观察到与外泌体或更大的大小相似的EV从主细胞体的质膜或各种细胞类型的膜发芽延伸，例如，微绒毛、丝状伪足、纤毛和鞭毛（图2）。外泌体大小范围内的EV在大小、密度和膜方向方面具有相同的生物物理特征（图1），因此，目前的方法无法有效地分离它们。关于细胞类型、环境条件和其他因素（例如，感染或分子的人工表达），MVB衍生的外泌体与其他小型EV的相对比例是高度可变的，并且通过大多数当前方案获得的样本可以包含内体（即外泌体）和非内体来源的小EV的混合物，以及其他基于脂质但非囊泡结构，如各种密度的脂蛋白（中、高、低或极低密度脂蛋白），以及新发现的外泌体（图1）。最近，富含晚期内体组分的外泌体被定义为带有四跨膜蛋白CD63（一种在MVB中积累的蛋白质）和CD9/CD81（主要在质膜上）的小型EV亚型，尽管该定义仍需其他细胞和条件的验证。
图1、不同EV亚型的物理特征。
这里将不同的EVs亚型与其它共分离的颗粒一起描绘，展示了这些EVs的亚细胞来源（内体或来自质膜）以及大小和密度范围。无论分泌机制如何，由于重叠的物理特性，不同的EV亚型不能根据大小或密度完全分离。例如，小微泡、外泌体和包膜病毒之间就不能完全分开。当细胞经历细胞凋亡时产生的细胞碎片，例如凋亡小体或小的凋亡小泡，可能与其他EV无法区分。可以与EV共分离的其他分泌颗粒包括外泌颗粒（exomeres）和不同类型的脂蛋白。在对含有这些囊泡的流体进行差速离心时，最大的（例如> 300 nm）以低速（约2,000g）和短时间（20-30分钟）离心回收，然后回收中等大小的EVs（150-300 nm），约10-20,000g，不到30分钟。最小的EV（<150 nm）主要在高速超速离心后获得，但这些样本可能包括最小的非EV成分（如，exomeres和高密度脂蛋白），特别是如果进行长时间离心。通过结合基于大小和密度的分离方法，可以将脂蛋白与EV分离。IDL：中密度脂蛋白；LDL：低密度脂蛋白；VLDL：极低密度脂蛋白。
在许多病理生理情况中，EV可发挥许多功能，包括参与癌症、免疫应答、心血管疾病、再生和基于干细胞的疗法。尽管许多研究将这些功能描述为外泌体特异性，但在许多外泌体制剂中发现的EV的潜在异质亚细胞来源表明多种EV类型的更广泛的功能相关性。这篇综述讨论了外泌体和质膜衍生的EV在生物发生和分泌、靶向和递送到受体细胞和随后的功能方面的特异性。
图2、EV分泌的机制
在质膜（微泡、微粒或ectosomes）或晚期内体MVB（外泌体）中EV生物发生和分泌的分子机制。Rab27a/b参与外泌体的MVB依赖性分泌，但也参与病毒和高尔基体衍生的分泌颗粒的释放。由SMAses和ESCRT产生的神经酰胺促进质膜和MVB内部的囊泡形成。两个位置的EV分泌需要ARF6和肌动蛋白细胞骨架的解聚。相比之下，磷脂酰乙醇胺（PE）和磷脂酰丝氨酸（PS）的外翻可能更具体地参与质膜衍生的EV分泌，而V-ATP酶介导的MVB酸化可能是外泌体分泌的特异性控制机制，尽管V-ATP酶抑制剂也可能影响高尔基体V-ATP酶。PLD2, phospholipase D2; PtdIns(4,5)P2, phosphatidylinositol-4,5-bisphosphate; SDC1, syndecan-1; SDCBP, syntenin-1。
该综述的主要内容包括：（1）囊泡在MVB内或质膜上出芽，其中介绍了ESCRT、脂质、Syndecan和syntenin、MVB酸化；（2）细胞内外泌体运输和EV分泌，这方面介绍了Rab GTPases、SNAREs、细胞骨架；（3）包膜病毒与外泌体和其他小型EVs的比较；（4）EV摄取的生物学及其功能的举例。
最后Thery也提出一些问题。尽管人们对这一领域的兴趣日益增加，但我们对控制EV生物发生、释放、摄取和功能的细胞和分子机制的理解仍然有限。精确表征EV的主要挑战是分离和表征特定亚型的技术难度，因为目前我们使用的方法无法完全区分不同亚细胞来源的EV。因此，尽管许多文章使用术语“外泌体”来指代通过物理过程与较大的EV分离的EV样本，但它们很可能是指外泌体和非外泌体性质的小EV的混合物。因此，除非他们的MVB起源已经明确建立，否则最好使用通用术语“小型EV”。
为了使EV领域取得进展，有必要以综合的方式进行研究，包括分子、细胞和功能表征，并尽可能地比较给定实验系统中的不同EV亚型。这些方法对于确定不用EV亚型的不同分子或机制是至关重要的。
目前尚未就EVs或给定EV亚型在受体细胞的胞质溶胶中递送内容物的主要途径达成共识。确定是否通过巨胞饮作用或微胞饮作用和/或受体介导的途径发生内化，以及这些过程是否导致货物递送对于理解和控制EV摄取是必不可少的。或可通过跟踪存在于许多不同EV类型中的通用可溶性成分，以确定物质交换具有显著生理和生化作用的条件。然后，该知识将允许表征EV摄取和内容物递送的细胞和分子基础。考虑各种生物发生、释放和摄取途径如何影响与EV无关的细胞内功能也很重要。这样的系统分析将有助于在生理和病理环境中识别特定EV功能，并且将有助于转化该知识以用于治疗EV的病理效应或EV相关细胞机制的治疗应用。
参考文献：
Mathieu M, Martin-Jaular L, Lavieu G, Théry C. Specificities of secretion and uptake of exosomes and other extracellular vesicles for cell-to-cell communication. Nat Cell Biol. 2019 Jan;21(1):9-17. doi: 10.1038/s41556-018-0250-9. Epub 2019 Jan 2.
外泌体资讯网 【NCB】Théry大牛的最新细胞外囊泡综述
